Твой котик
Назад

Порядок применения туберкулинов

Опубликовано: 12.09.2020
Время на чтение: 64 мин
0
1

Диагностические исследования при антропозоонозных инфекциях (на примере туберкулеза крупного рогатого скота) | уралбиовет

Туберкулез – широко распространенное инфекционное заболевание человека и жи-вотных, вызываемое микобактериями туберкулезного комплекса (Mycobacterium tubercu-losis complex – MTBC). От больных туберкулезом животных могут заражаться люди, для них наиболее опасны Mycobacterium bovis (микобактерии туберкулеза бычьего). От лю-дей, больных туберкулезом, микобактериями туберкулеза человека – Mycobacterium tu-berculosis может заражаться крупный рогатый скот. Диагноз на туберкулез у крупного ро-гатого скота ставят на основании результатов аллергических, патолого-анатомических, гистологических и бактериологических исследований с учетом эпизоотологических данных и клинических признаков.

На современном этапе обеспечение эпизоотического благополучия сельскохозяйственных организаций по туберкулезу крупного рогатого скота (КРС) является одной из актуальных задач ветеринарной науки и практики. В Российской Федерации мероприятия по профилактике туберкулеза и по борьбе с ним проводятся в соответствии с санитарными и ветеринарными правилами «Профилактика и борьба с заразными болезнями, общими для человека и животных», утвержденными Госкомсанэпиднадзором и Департаментом ветеринарии Минсельхоза России 18 июня 1996 года, и «Наставлением по диагностике туберкулеза животных», утвержденным Департаментом ветеринарии Минсельхоза России 18 ноября 2002 года [1]. Ключевым звеном в программе мероприятий по профилактике и ликвидации туберкулеза крупного рогатого скота и по оздоровлению КРС служат «…систематические ди-агностические исследования животных, выделение из стад больных живот-ных или целых неблагополучных групп с последующим их убоем…» [4]. Диагноз «Туберкулез» устанавливается на основании результатов комплексных исследований (рис. 1)

tub-1
Рис. 1. Схема комплексных исследований крупного рогатого скота на туберкулез

Мониторинг эпизоотической ситуации по туберкулезу крупного рогатого скота в административно-территориальных субъектах осуществляется согласно пункту 1.3 раздела 1 «Инструкции о мероприятиях по профилактике и ликвидации туберкулеза животных» [4].

Прижизненная диагностика туберкулеза у крупного рогатого скота проводится аллергическим методом.
Аллергический метод – внутрикожная туберкулиновая проба с применением Пурифиед Протеин Дериватив – туберкулина (ППД-туберкулин) для млекопитающих. Туберкулин вводят крупному рогатому скоту в середину шеи (рис. 2). Учет и оценку реакции на введение туберкулина проводят через 72 часа. Животных считают положительно реагирующими на туберкулин при утолщении кожной складки на 3 мм и более. Толщину кожной складки в месте введения туберкулина измеряют кутиметром, а полученный показатель сравнивают с толщиной кожной складки рядом с местом введения препарата [3, 4].

tub-2.png
Рис. 2. Туберкулиновая проба у крупного рогатого скота [6]

Для дифференциации парааллергических реакций у крупного рогатого скота используется симультанная проба с одновременным применением двух туберкулинов – для млекопитающих и для птиц или туберкулина для млекопитающих и комплексного аллергена из атипичных микобактерий (КАМ).

Симультанная проба проводится в том же порядке, что и туберкулиновая (рис. 3). Проба является групповой и дает возможность оценить ситуацию по туберкулезу лишь в целом по стаду или по группе (не менее 6 голов) обследуемых животных. Под достоверностью различия понимают такое различие в величине показателей интенсивности реакций на туберкулин и КАМ, которое дает возможность с уверенностью не менее чем на 95 % сделать заключение о состоянии по туберкулезу обследуемой группы животных [3].

tub-3
Рис. 3. Симультанная аллергическая проба с использованием ППД-туберкулина и комплексного аллергена из атипичных микобактерий [11]

Офтальмопроба на туберкулез (глазной метод туберкулинизации).
Туберкулин в количестве 3–5 капель наносится на конъюнктиву нижнего века или на поверхность роговицы глаза животного. Проводится офтальмопроба двукратно с 5–6-дневным интервалом [2, 4, 5]. Результаты офтальмопробы оценивают через 6, 9, 12 и 24 часа после первого и через 3, 6, 9 и 12 часов после повторного введения туберкулина. Реакция считается положительной, если образуется гнойный или слизисто-гнойный секрет, который накапливается в конъюнктивальном мешке или вытекает в виде шнура из внутреннего угла глаза. Кратковременная гиперемия слизистых оболочек глаза и слезотечение с образованием небольшого количества слизистого секрета рассматриваются как отрицательная реакция [3].

Факторы, обуславливающие проявление неспецифических реак-ций на туберкулин у КРС
В многочисленных исследованиях было показано, что проявления неспецифических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота обусловлены многочисленными факторами внешней среды и индивидуальными особенностями организма животного [2, 3, 5]. Неспецифические реакции подразделяются на две основные группы: парааллергические и псевдоаллергические (см. таблицу).

Причины возникновения неспецифических реакций у крупного рогатого скота на введение туберкулина

Неспецифическая реакция Фактор, обуславливающий проявление неспецифической реакции Особенности неспецифической реакции
Парааллергическая Атипичные (нетуберкулезные) виды микобактерий и их ассоциации.

Mycobacterium tuberculosis (микобактерии туберкулеза человека). Mycobacterium avium (микобактерии туберкулеза птичьего)

Непостоянство реакции на туберкулин.

Сенсибилизация организма животного сохраняется от 1 до 3 месяцев после инфицирования [5].

Выявление наибольшего количества животных с выраженными реакциями на КАМ

Псевдоаллергическая Наличие гельминтов (фасциол, дикроцелий, эхинококков).
Актиномикоз.
Микологические поражения легких.
Гнойные или гнойно-некротические процессы во внутренних органах.
Нарушения обмена веществ
В благополучных по туберкулезу стадах у отдельных животных регистрируется увеличение толщины кожной складки на месте введения туберкулина на 3–4 мм, признаки воспаления отсутствуют

Причиной возникновения неспецифических реакций у крупного рогатого скота на введение туберкулина могут служить:
1)несоблюдение трехнедельного интервала между туберкулинизацией и вакцинацией (в этот период происходит сенсибилизация организма, и здоровые животные дают положительную реакцию на туберкулин);
2)«человеческий фактор» (диагностические исследования про-водят профессионально не подготовленные лица; наруша-ется методика проведения туберкулинизации и т. д.).

Лабораторные методы диагностики туберкулеза КРС
К лабораторным методам диагностики туберкулеза относятся бакте-риологическое исследование, серологическое исследование и молеку-лярно-биологическое исследование.
Бактериологическое исследование проводится с целью выделения возбудителя туберкулеза (рис. 4).

Отбор проб биоматериалов для бактериологического исследования производят как от животных с клиническими признаками туберкулеза, так и от животных, вызывающих подозрение на туберкулез. Исследуют молоко, мокроту, мочу. От павших и убитых животных для исследования отбирают пораженные участки органов на границе со здоровой тканью и измененные лимфатические уз-лы.

tub-4.png
Рис. 4. Культура Mycobacterium bovis. Среда роста Гельберга [10]

При наличии характерных для туберкулеза изменений исследуются портальные, предлопаточные, надвыменные, поверхностные паховые лимфатические узлы и фрагменты внутренних органов – легких, печени, почек.

Бактериологическое исследование биоматериалов на туберкулез за-нимает срок до 3 месяцев. Заболевание животных туберкулезом считается установленным в случаях выделения микобактерий туберкулеза бычьего или человеческого из материала от убитых животных [3, 4, 8].

Серологическое исследование на туберкулез проводится в реакции связывания комплемента (РСК).
РСК применяется в двух вариантах:
1) для обнаружения в сыворотке больного животного специфических антител к возбудителю туберкулеза;
2) для выявления и идентификации в исследуемом материале антигена возбудителя туберкулеза.

Проводят серологическое исследование в сельскохозяйственной ор-ганизации в случаях, предусмотренных пунктом 2.7 раздела 2 «Инструкции о мероприятиях по профилактике и ликвидации туберкулеза животных», а именно «…в случаях выявления в благополучном по туберкулезу стаде (на ферме) крупного рогатого скота при плановом исследовании реагирующих на туберкулин животных…» [4].

Молекулярно-биологическое исследование на туберкулез.
Полимеразная цепная реакция (ПЦР) является одним из высокочувствительных и специфичных методов диагностики туберкулеза. Чувствительность метода ПЦР – от 10 до 100 микроорганизмов в пробе (чувствительность микроскопического метода – от 103 до 105 микроорганизмов). В основе метода лежит амплификация специфических участков ДНК возбудителя, которые содержатся в исследуемой пробе. В настоящее время в лабораторной практике применяются тест-системы как для выявления ДНК конкретного вида, так и для дифференцирования видов, входящих в Mycobacterium tuberculosis complex: микобактерий человеческого вида (M. tuberculosis), бычьего вида (M. bovis) и вакцинного штамма микобактерий бычьего вида (M. bovis BCG). Для проведения анализа используют следующие образцы биопроб от крупного рогатого скота: цельную кровь, молоко, фарингеальные смывы, мочу, фекалии, носовую слизь и биопсийные материалы, в том числе лимфатические узлы [3].

Молекулярно-биологическое исследование позволяет значительно ускорить раннюю диагностику туберкулеза, дифференцировать пара- и псевдоаллергические реакции на туберкулин, снизить количество подозреваемых в заражении туберкулезом и подвергаемых диагностическому убою животных [4, 5].

Патолого-анатомические исследования
Для убоя с диагностической целью отбирают животных по результатам вышеизложенных методов исследования.
Патолого-анатомические изменения в организме больного туберкулезом животного зависят как от его возраста, так и от стадии инфекционного процесса.
В начальных стадиях инфекционного процесса туберкулы имеют вид серых полупрозрачных узелков размером от булавочной головки до чечевичного зерна. Затем они становятся мутными, приобретают бело-желтый цвет, заполняются некротизированной сухой творожистой массой. В легких туберкулезные очаги поражения чаще выделяются над плеврой по тупому краю органа (рис. 5).

tub-5.png
Рис. 5. Легкое крупного рогатого скота при туберкулезном поражении тканей [9]

Молочная железа, печень, селезенка и почки у крупного рогатого скота поражаются обычно при генерализованном процессе. «Жемчужница» (туберкулезное поражение серозных покровов) регистрируется с одновременным поражением паренхиматозных органов и региональных лимфатических узлов (рис. 6).

tub-6
Рис. 6. Туберкулезные поражения серозных покровов («жемчужница») и регионар-ных лимфатических узлов у теленка [7]

Гистологические исследования проводят для дифференциации туберкулезных патолого-анатомических изменений от сходных изменений, наблюдаемых при других заболеваниях, например для дифференциации от гранулем паразитарного и микотического происхождения. В положительных случаях в гистологических препаратах, окрашенных по Цилю – Нильсену, находят гранулемы с некротизированным центром, окруженные зоной эпителоидных, отдельных гигантских лимфоидных клеток и соединительно-тканной капсулой.

Вместо заключения
Осуществление плановых профилактических диагностических иссле-дований на туберкулез способствует снижению риска инфицирования людей туберкулезом, ограничению распространения возбудителя из очагов инфекции, раннему выявлению неблагополучных по туберкулезу населенных пунктов.

Авторы:
И. А. Шкуратова, доктор ветеринарных наук, профессор, главный научный сотрудник, директор ФГБНУ «Уральский научно-исследовательский ветеринарный институт» (ФГБНУ «Уральский НИВИ»), Екатеринбург
А. П. Порываева, доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник отдела мониторинга и прогнозирования инфекционных болезней ФГБНУ «Уральский НИВИ», Екатеринбург
А. С. Красноперов, кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник отдела экологии и незаразной патологии ФГБНУ «Уральский НИВИ», Екатеринбург
С. В. Малков, кандидат ветеринарных наук, научный сотрудник от-дела экологии и незаразной патологии ФГБНУ «Уральский НИВИ», Екатеринбург


Библиографические ссылки

1. Боровой В. Н. Эпизоотическая ситуация по основным заразным болезням животных в Российской Федерации /Департамент ветеринарии Минсельхоза России.

2. Воронин Е. С., Бессарабов Б. Ф., Вашутин А. А. Инфекционные болезни животных. М. : КолосС, 2007. 671 с.

3. Дифференциальная диагностика неспецифических реакций у крупного рогатого скота при диагностическом исследовании на туберкулез. Методические рекомендации / А. Т. Татарчук, Н. В. Чурина, Л. Н. Аристархова, А. А. Малыгина, О. В. Виноградо-ва, Т. В. Рыбакова. Екатеринбург : ИРА УТК, 2004. 24 с.

4. Инструкция о мероприятиях по профилактике и ликвидации ту-беркулеза животных. Утв. Главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР 29.12.1983 г.

5. Найманов А. Х., Гулюкин М. И. Микобактериальные инфекции крупного рогатого скота. М.: Зооветкнига, 2020. 235 с.

6. Оценка активности национального стандарта туберкулина для млекопитающих относительно первого международного стандарта туберкулина Bovine

7. Патоморфологические изменения в организме животных при туберкулезе https://studfiles.net/preview/2901312/page:2/ (дата обращения: (16.11.2020).

8. Санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.2.3114-13 «Профилактика туберкулеза». Зарегистр. в Минюсте России 06.05.2020 № 32182.

9. Туберкулез. URL: https://vetcenter29.ru/tuberkulez.html (дата обра-щения: 16.11.2020).

10. Туберкулез URL: https://nsau.edu.ru/images/vetfac/images/ebooks/microbiology/stu/micro/tuberk.htm (дата обращения: 16.11.2020).

11. Эпизоотология туберкулеза крупного рогатого скота URL: https://studfiles.net/preview/2901312/page:3/ (дата обращения: 15.11.2020).

Порядок применения туберкулинов

Лекции.Орг

Внутрикожная туберкулиновая проба — высокоспецифическая реакция на туберкулез. Однако она зависит от общей иммунореактивности организма. У животных низкой упитанности, старых, глубокостельных, а также при генерализованном туберкулезном процессе реакция на туберкулин может быть слабо выражена или не проявиться. Такое состояние называют анергией.

Известно и состояние парааллергии, когда сенсибилизация организма определенным антигеном создает повышенную чувствительность к другому антигену — аллергену. Проявлением парааллергии является, например, положительная проба на бычий туберкулин у крупного рогатого скота, сенсибилизированного кислотоупорными бактериями-сапрофитами, обитающими в некоторых местностях в торфе и почве. Положительная реакция на внутрикожное введение птичьего туберкулина у больного паратуберкулезом крупного рогатого скота также связана с состоянием парааллергии.

Изредка положительный результат аллергических проб на бычий туберкулин отмечают у крупного рогатого скота, больного эхинококкозом, диктиокаулезом, лейкозом. В таких случаях говорят о псевдоаллергии, связанной с аутоаллергизацией организма продуктами распада тканей.

Для дифференциации неспецифических реакций применяют симультанную аллергическую пробу, которую проводят одновременно туберкулином для млекопитающих и комплексным аллергеном из атипичных микобактерий (КАМ). Если внутрикожная реакция на введение КАМ выражена более интенсивно, чем на туберкулин млекопитающих, реакцию считают неспецифической, материал от таких животных исследуют на туберкулез лабораторными методами.

Туберкулинизацию животных разрешается проводить только ветеринарным врачам и ветеринарным фельдшерам со специальным средним образованием под контролем врача.

Каждый флакон с туберкулином и растворителем перед применением просматривают. При обнаружении в препаратах каких - либо примесей, при нарушении целостности стекла или укупорки, отсутствии надписей на флаконах их выбраковывают.

Для внутрикожного и пальпебрального введения туберкулина используют шприцы с бегунком вместимостью 1 - 2 мл и иглы для внутрикожных инъекций № 0606 ТУ 46-22-607 или безыгольные инъекторы БИ-7, ИБВ - 02.

Для нанесения туберкулина на конъюнктиву применяют глазные пипетки, для внутривенного введения - шприцы вместимостью 5 - 10 мл и иглы для подкожных инъекций.

Туберкулин используют только в день вскрытия флакона, остатки препарата сливают в канализацию.

Инструменты, используемые для туберкулинизации, не разрешается применять для введения животным других веществ.

Шприцы, иглы и глазные пипетки до и после их использования стерилизуют кипячением в течение 10 мин в дистиллированной или кипяченой воде без добавления дезинфицирующих веществ. Безыгольные инъекторы стерилизуют в соответствии с наставлением по их применению.

Во время проведения внутрикожной и пальпебральной туберкулинизации животных инъекционные иглы сменяют на стерильные перед каждым наполнением шприца туберкулином, а в паузах между инъекциями препарата иглу держат в ватном тампоне, смоченном 70%-ным этиловым спиртом, не снимая ее со шприца.

При внутривенном введении туберкулина для каждого животного используют отдельную стерильную иглу.

Для исследования на туберкулез применяют.

- у млекопитающих животных (кроме свиней) - очищенный (ППД) туберкулин для млекопитающих;

- у свиней - одновременно очищенный (ППД) туберкулин для млекопитающих и сухой очищенный (ППД) туберкулин для птиц;

- у птиц - сухой очищенный (ППД) туберкулин для птиц.

Сухие туберкулины непосредственно перед применением растворяют. Для этого содержимое одного флакона с туберкулином растворяют в одном флаконе прилагаемого к нему растворителя.

При исследовании свиней содержимое двух флаконов туберкулина для птиц растворяют в одном флаконе растворителя.

Внутрикожная и пальпебральная туберкулиновая проба

Туберкулинизации подвергают животных, начиная с двухмесячного возраста. Коров (нетелей), буйволиц, верблюдиц исследуют независимо от периода беременности. Самок других видов животных исследуют через 1 - 2 недели после родов.

Не разрешается исследовать животных в течение трех недель после вакцинации против инфекционных болезней.

Перед введением туберкулина волосяной покров у животных (кроме овец, коз и норок) выстригают, перья выщипывают, кожу обрабатывают 70гр.-ным этиловым спиртом.

Вводить туберкулин в кожу, имеющую травматические повреждения, уплотнения и абсцессы, поражения грибками, клещами или гельминтами запрещается.

Рис. 4. Безыгольный инъектор:

1 —рабочее сопло;

2— флакон с аллергеном;

3—регулировочный винт;

4—спусковой рычаг;

5— рукоятка

Туберкулин вводят внутрикожно в дозе 0,2 мл:

- крупному рогатому скоту, буйволам, зебувидным, оленям (маралам), кроме быков - в середине шеи (в этой области не разрешается вводить животным какие либо другие биологические препараты и вещества);

- быкам - в подхвостовую складку;

- верблюдам - в кожу брюшной стенки в области паха на уровне горизонтальной линии седалищного бугра;

- свиньям - в области наружной поверхности уха в 2 - 3 см от его основания, при этом в кожу одного уха вводят туберкулин для млекопитающих, а в кожу другого уха - туберкулин для птиц.

Собакам, пушным зверям (кроме норок) туберкулин вводят в области внутренней поверхности бедра или локтевой складки.

Туберкулин вводят внутрикожно в дозе 0,1 мл:

- кошкам - на внутренней поверхности уха,

- курам - в бородку,

Туберкулин вводят пальпебрально (в толщу века):

- козам и овцам в дозе 0,2 мл в нижнее веко, отступя от его края на 1,5-2 см,

- норкам в дозе 0,1 мл - в верхнее веко.

Учет и оценку реакции проводят у крупного рогатого скота, буйволов, зебувидных, верблюдов и оленей через 72 часа после введения препарата, у коз, овец, свиней, собак, кошек, обезьян, пушных зверей - через 48 часов, у птиц - через 30 - 36 час.

При учете реакции на введение туберкулина у каждого обследуемого животного прощупывают место введения препарата. При пальпебральном введении туберкулина визуально также сравнивают веки левого и правого глаза.

При обнаружении припухлости в месте введения туберкулина у крупного рогатого скота, буйволов, зебувидных, верблюдов, оленей измеряют кутиметром толщину кожной складки в миллиметрах и определяют величину ее утолщения сравниванием с толщиной складки неизмененной кожи в близи от места введения туберкулина.

Животных считают реагирующими на туберкулин:

- крупный рогатый скот (кроме быков), буйволов, зебувидных, верблюдов, оленей - при утолщении кожной складки на 3 мм и более независимо от характера припухлости (отечности, болезненности, повышения местной температуры);

- быков (волов), коз, овец, свиней, собак, кошек, обезьян, пушных зверей, птиц - при образовании ощутимой припухлости в месте введения туберкулина.

Рис. 5. Определение с помощью кутиметра размера утолщения кожной складки при положительном результате внутрикожной пробы на туберкулез: вверху — кожная складка до введения туберкулина; внизу - через 72 ч после введения туберкулина

Глазная туберкулиновая проба (офтальмопроба)

Глазную туберкулиновую пробу применяют для диагностики туберкулеза у лошадей.

У крупного рогатого скота эту пробу можно применять только одновременно с внутрикожной пробой в неблагополучных по туберкулезу хозяйствах для дополнительного выявления зараженных животных.

Офтальмопробу можно использовать также одновременно с внутрикожной пробой при выборе животных для диагностического убоя. Наиболее часто диагноз на вскрытии подтверждается у животных, реагирующих одновременно на внутрикожную пробу и офтальмопробу.

При каких - либо поражениях глаз исследование животных офтальмопробой запрещается.

Глазную туберкулиновую пробу проводят двукратно с интервалом 5-6 сут. между первым и вторым введением препарата. Туберкулин в количестве 3 -5 капель наносят пипеткой или шприцем с бегунком без иглы на конъюнктиву при оттянутом нижнем веке.

Животных в период повторного введения туберкулина и учета реакции содержат на привязи.

Учет и оценку реакции проводят через 3, 6, 9, и 12 часов после повторного введения туберкулина. Реакция характеризуется гиперемией и возможным отеком конъюнктивы, накапливанием в конъюнктивальном мешке гнойного или слизисто-гнойного секрета и вытеканием его из внутреннего угла глаза в виде шнура.

При каждом учете реакции у всех обследуемых животных необходимо осматривать конъюнктивальный мешок, т.к. реакция может ограничиться кратковременным образованием гнойного секрета в виде зернышек.

Внутривенная туберкулиновая проба

Внутривенную туберкулиновую пробу применяют с целью отбора животных для диагностического убоя. У больных туберкулезом животных реакция на внутривенное введение туберкулина характеризуется в большинстве случаев повышением температуры тела. Возможна общая реакция организма в виде судорожных явлений, сильного беспокойства, редко - потеря сознания и гибель от анафилактического шока.

Туберкулин вводят после проведения внутрикожной пробы только взрослым животным, за исключением коров в течение месяца до отела и месяца после отела.

Перед введением туберкулина у животных измеряют температуру тела. Животных с температурой тела 39,6 гр.С и выше внутривенной туберкулиновой пробой не исследуют.

Непосредственно перед применением раствор туберкулина разводят в два раза (один флакон раствора туберкулина разводят таким же количеством растворителя микобактериальных аллергенов или стерильного физиологического раствора) и получают 50%-ный раствор препарата.

Исследуемому животному вводят в яремную вену 1 мл 50%-ного раствора туберкулина на 100 кг массы тела (обычно 4 мл).

Учет и оценку реакции проводят через 3,6 и 9 час. после инъекции препарата путем измерения температуры тела животного.

Реагирующими на внутривенную пробу считают животных с повышением температуры тела хотя бы при одном измерении на один и более градусов выше 39 гр.С.

Применение туберкулинов не требует ограничений в сроках убоя животных на мясо, использования молока и другой продукции.

Аллергические исследования на сап. Для этой цели применяют маллеин, его выпускается в готовом виде биофабриками в специальных ампулах.

Методом офтальмопробы животных исследуют двукратно с интервалом 5...6 дней. Для этого 3...5 капель аллергена (малеина) наносят стерильной глазной пипеткой на конъюнктиву слегка оттянутого нижнего века или под третье веко.

Результаты первой офтальмопробы с маллеином учитывают через 3, 6, 9, 12 и 24 ч, второй — через 3, 6, 9 и 12 ч;

При учете реакции осматривают конъюнктиву, открывая во всех случаях глаз животного.

По степени проявления реакцию на маллеин у лошадей подразделяют на положительную, сомнительную и отрицательную.

Положительная реакция характеризуется гиперемией и отеком конъюнктивы, выделением из внутреннего угла глаза слизисто-гнойного или гнойного секрета, накапливающегося в конъюнктивальном мешке, а затем вытекающего в виде шнура.

Отрицательная реакцияхарактеризуется слабым покраснением конъюнктивы, незначительным слезотечением или отсутствием каких-либо отклонений от нормы.

В качестве сомнительной реакциитрактуют небольшое слезотечение или скопление гноя в углу глаза.

Аллергическое исследование на бруцеллез.Для этого применяютбруцеллин ВИЭВ. Овцам и козам препарат вводят под кожу нижнего века левого глаза в дозе 0,5 мл. Животным с заболеванием глаз бруцеллин вводят в одну из подхвостовых складок внутрикожно в дозе 0,2 мл. Свиньям бруцеллин вводят внутрикожно в дозе 0,2 мл с наружной стороны ушной раковины левого уха ближе к его основанию. На месте введения препарата образуется уплотненный бугорок размером с горошину.

Предлагаем ознакомиться  Спаниели: все породы с фото и описанием

Реакцию на введение бруцеллина у овец и коз учитывают 1 раз через 42—48 ч, у свиней — 2 раза через 24 и 48 ч осмотром и пальпацией места инъекции. В целях более полного выявления больных в отарах, неблагополучных по бруцеллезу, животным, не реагировавшим на первое введение, бруцеллин вводят через 42—48 ч повторно в то же место и в той же дозе. После второго введения аллергена реакцию учитывают через 24 ч. При обнаружении припухлости на месте введения препарата реакцию оценивают как положительную.



Дата добавления: 2020-11-18; просмотров: 4593 | Нарушение авторских прав | Изречения для студентов


Читайте также:

Рекомендуемый контект:

Поиск на сайте:

© 2020-2020 lektsii.org - Контакты - Последнее добавление
Ген: 0.005 с.

§

Лекции.Орг

Обнаружение патогенных микроорганизмов в патологическом материале дает возможность поставить этиологический диагноз. Это бесспорно один из самых важных методов диагностики. Однако бактериологический диагноз даже с применением биологической пробы на лабораторных животных в большинстве случаев не дает права на окончательный диагноз без учета других методов исследования. В практике часто встречаются бактерионосительство, смешанные инфекции, которые могут изменить картину болезни и затруднить постановку диагноза. Например, чума свиней осложняется сальмонеллезом или пастереллезом. Выделение сальмонеллы или пастереллы не дает права на окончательный диагноз.

Для исключения ошибок очень важно правильно взять пробы для бактериологического исследования и грамотно написать сопроводительную.

Пробы для бактериологического исследования берут от больных животных и трупов.

В зависимости от вида инфекции у клинически больных животных берут соответствующий, специфический для данной болезни материал, соблюдая меры личной безопасности.

От больных животных пробы берут с целью выявления бактерионосителей, а также с целью постановки этиологического диагноза. В зависимости от цели исследования пробы могут быть разнообразные. Чаще всего от больного животного для исследования берут молоко, кровь, кал, мочу, мокроту, гной из абсцессов, экссудат из мест его скопления, истечения из половых органов, соскобы из прямой кишки, соскобы с пораженных участков кожи и т. д.

При взятии проб для бактериологического, вирусологического и микологического исследований при жизни животного необходимо соблюдать правила асептики и антисептики. Посуда и инструменты должны быть стерильными, поле операции или место взятия пробы тщательно обрабатывают.

Секрет молочных железслужит объектом исследования при тех заболеваниях, при которых возбудитель активно выделяется с молоком (туберкулез, бруцеллез, сальмонеллез, мастит). У коров вымя обмывают теплой водой с мылом, соски обрабатывают 70%-м спиртом. Первые струйки молока удаляют, в стерильные сосуды набирают 15...20 мл секрета из первой и последней порций, полученных при выдаивании.

У овец и коз пробы получают путем пункции цистерны вымени. Поле операции готовят у основания соска, стерильной иглой, соединенной со шприцем, делают пункцию, набирают в шприц секрет и переносят его в стерильные пробирки с резиновыми пробками.

Моча чаще всего служит объектом исследования при подозрении на лептоспироз. У коров и свиноматок мочу можно брать непосредственно из мочевого пузыря с помощью катетера или собирать при естественном мочеиспускании в чистые пробирки, банки. Легче всего мочу получать после утреннего подъема животных, а у свиней - в любое время дня после 1-2-часового лежания.

Кал берут из прямой кишки в стерильную посуду, которую закрывают плотной крышкой. При обнаружении на стенке прямой кишки слизи, утолщений или других патологических изменений дополнительно делают соскобы; их помещают в отдельную посуду.

Выделения из верхних дыхательных путей и ротовой полости собирают в посуду при естественном истечении или поступают так: крылья носа и переднюю часть носовых ходов обмывают водой, после чего выделения собирают стерильными тампонами из глубоких частей носа. Тампоны помещают в стерильные пробирки, содержащие по 0,5 мл стерильного физиологического раствора.

Содержимое синовиальных бурс и абсцессов берут следующим образом. Шерсть выстригают, кожный покров обрабатывают 70%-м спиртом и смазывают настойкой йода. Затем стерильным шприцем с иглой большого диаметра делают пункцию и переносят пунктат в стерильную пробирку с резиновой пробкой.

Материал из язв и ран получают методом соскоба на границе пораженной издоровой тканей.

Волосы и участки кожи исследуют при кожных заболеваниях. При этом волосы выщипывают, а соскобы с кожи делают скальпелем на границе пораженной и здоровой тканей.

Кровь для серологических исследований берут в разгар заболевания, а в некоторых случаях повторно через 10...20 дней по 10 мл от двух-трех больных животных в разные пробирки.



Дата добавления: 2020-11-18; просмотров: 766 | Нарушение авторских прав | Изречения для студентов


Читайте также:

Рекомендуемый контект:

Поиск на сайте:

© 2020-2020 lektsii.org - Контакты - Последнее добавление
Ген: 0.002 с.

§

Лекции.Орг

Полученные пробы отправляют в лабораторию в свежем виде; если невозможно отправить в течение ближайших 24...30 ч, то их фиксируют в консерванте.

Патматериал для гистологического исследованияконсервируют 10%-ным водным раствором формалина или 96%-м этиловым спиртом. Объем консерванта должен в 10 раз превышать объем взятого материала.

Материал, предназначенный для бактериологического исследования, фиксируют 30 %-м химически чистым глицерином (лучше на физиологическом растворе) или вазелиновым маслом. Соотношение патматериала и консерванта 1:4 или 1:5. Трубчатую кость и кишечник обычно консервируют поваренной солью.

Для вирусологического исследованияматериал консервируют 30-50 % -м глицерином на стерильном физиологическом растворе. Наилучший и простой метод сохранения биологических свойств вирусов в патматериале — охлаждение. Надежно закрытые флаконы заворачивают в вату или упаковочную бумагу и плотно укладывают в термос, заполненный на 1/3 снегом или льдом. При этом в термосе в течение 12-24 ч удерживается температура 2-6 С, при которой вирусы сохраняются практически без изменений.

Оформление документов на отправляемый материал.На взятый патологический материал ветеринарный врач составляет сопроводительный документ (форма 3). В документе необходимо указать также эпизоотическую ситуацию хозяйства, лечили животное или нет; если лечили, то какими препаратами, как законсервирован материал; число отправленных упаковок с пробами.

Форма 3

В ________________________________________ ветеринарную лабораторию

Адрес ____________________________________________________________

При этом направляется для __________________________________________

патологический материал (перечислить какой) __________________________

от _____________________ , принадлежащего __________________________

(вид и возраст животного) (название хозяйства, фермы)

Дата заболевания животного _________________________________________

Дата падежа _______________________________________________________

Клиническая картина _______________________________________________

Данные патологоанатомического вскрытия _____________________________

Предположительный диагноз _________________________________________

Дата отправления материала _________________________________________

Должность _____________________________ Подпись ___________________

Задания для самостоятельной работы: 1. Указать порядок взятия материала для различных исследований от больных животных и трупов. 2. Методы фиксации патматериала. 3. Оформить сопроводительный документ к патологическому материалу.

ЛПЗ №6

Тема: Эпизоотологическое обследование хозяйства

Цель занятия: научиться проводить Эпизоотологическое обследование, составлять на него акт.

Материалы и оборудование: макеты хозяйств или компьютерные программы с типовыми данными по хозяйствам.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии или хозяйство.

Эпизоотологическое обследование — один из приемов эпизоотологического метода диагностики, представляет собой комплекс мероприятий цель которых:

- всесторонне изучить причины возникновения эпизоотических очагов;

- выяснить условия, благоприятствующие или препятствующие распространению определенных инфекционных болезней в конкретном хозяйстве;

- уточнить диагноз;

- выявить источники и пути заноса возбудителя инфекции, механизм его передачи;

- определить границы эпизоотического очага, неблагополучного пункта, угрожаемой зоны;

- организовать мероприятия для быстрейшей локализации и ликвидации возникшего заболевания;

- устранить недостатки в системе противоэпизоотических мероприятий.

Эпизоотологическое обследование может быть проведено:

- в плановом порядке,в целях контроля иорганизации мероприятий по предупреждению заразных болезней в благополучных хозяйствах

- в экстренных случаях, когда возникают эпизоотические очаги среди сельскохозяйственных и диких животных.

При проведении эпизоотологического обследования применяют следующие понятия:

Эпизоотический очаг - любой объект, где обнаружены источники возбудителя конкретной инфекционной болезни.

Неблагополучный пункт — населенный пункт, на территории которого выявлен эпизоотический очаг.

Угрожаемая зона— населенные пункты, расположенные вокруг эпизоотического очага, в пределах которых возможно распространение болезни. Угрожаемую зону определяют местные ветеринарные органы с учетом хозяйственных связей, географических, климатических и природных условий при некоторых особо опасных инфекционных болезнях животных (ящур, классическая и африканская чума свиней, болезнь Ньюкасла и др.).

Обследование проводят и в оздоравливаемых хозяйствах перед снятием карантина или ограничений, чтобы оценить эффективность выполненных оздоровительных мероприятий, подготовить материалы для снятия карантина и определить профилактические мероприятия на будущее.

В эпизоотологическом обследовании выделяют три этапа: характеристику ныне существующей обстановки; дальнейшее наблюдение за эпизоотическими очагами; оценку полученных данных и разработку рекомендаций. Результаты обследования представляют в актах и на карточках эпизоотологического обследования, в таблицах, схемах и описаниях, эпизоотологических кадастрах и бюллетенях. Всю информацию кодируют по каждому пункту, концентрируют и вводят в автоматизированную базу данных для обработки на ЭВМ.

Эпизоотологическое обследование проводят комиссионно и оформляют актом.

План эпизоотического обследования включает в себя:

- изучение ветеринарно-санитарного состояния хозяйства,

- определение его эпизоотической ситуации в прошлом и настоящем,

- анализ причин заболеваемости и гибели животных,

- системы противоэпизоотических мероприятий.

1. Общая характеристика обследуемого пункта (территории):

Ø республика, край, область, район, административный округ, муниципалитет, хозяйство, пункт, ферма (двор);

Ø состав комиссии, дата и цель обследования;

Ø место расположения фермы (географические, топографические и климатические данные, удаленность от населенных пунктов, проезжих дорог, мясокомбинатов и др.);

Ø специализация хозяйства, технологические и экономические показатели (производственный цикл, продуктивность, показатели воспроизводства и др.);

Ø наличие животных по видам, категориям и возрастам (в том числе частного сектора);

Ø условия содержания, кормления, эксплуатации и ухода за животными;

Ø наличие и характеристика летних лагерей и пастбищ, водопоев и скотопрогонных трасс;

Ø наличие грызунов, насекомых (клещей);

Ø контакт сельскохозяйственных животных с животными других хозяйств и частных лиц, а также с автотранспортом, дикими животными, перелетными птицами, собаками, кошками и животными других видов;

Ø условия комплектования поголовья (система воспроизводства в хозяйствах закрытого типа);

Ø порядок поступления различных материалов и грузов, пути реализации продуктов животноводства, другие хозяйственные и транспортные связи и т. д.).

2. Ветеринарно-санитарная характеристика:

ü число (укомплектованность штатов) и квалификация зооветеринарных специалистов;

ü наличие и состояние ветеринарно-санитарных объектов;

ü ветеринарно-санитарное состояние территории;

ü обеспеченность ветимуществом, медикаментами, дезосредствами, биопрепаратами, инструментами, дезинфекционной техникой и специальным транспортом; условия хранения медикаментов, биопрепаратов и дезосредств.

3. Характеристика эпизоотического состояния хозяйства и проводимой профилактической противоэпизоотической работы:

· благополучие хозяйства по инфекционным болезням в настоящее время (наличие болезней невыясненной этиологии) и в прошлом (перечень болезней, срок неблагополучия, характер проведенных мероприятий, их эффективность);

· эпизоотическое состояние соседних хозяйств и пунктов, имеющих хозяйственно-экономические связи с обследуемым пунктом;

· наличие и анализ выполнения плана профилактических противоэпизоотических мероприятий на текущий год;

· содержание в карантине вновь поступивших животных (дата поступления, количество, наименование хозяйства-поставщика, время нахождения в карантине, порядок обработки и результаты исследований животных, документация и т. д.);

· охрана хозяйства от заноса возбудителей инфекционных болезней различными путями;

· система и порядок проведения ветеринарных осмотров и обработок животных, начиная с рождения и до убоя, или отправки в другие хозяйства;

· состояние диагностической работы;

· анализ причин выбытия животных;

· наличие и анализ содержания учетной и отчетной ветеринарной документации, характеризующей всю проводимую противоэпизоотическую работу;

· схемы, методы и средства проведения дезинфекции, дезинсекции и дератизации;

· осуществление постоянного ветеринарного надзора за передвижением, перевозкой и местами скопления животных;

· пути реализации животноводческой продукции;

· состояние ветеринарно-санитарной экспертизы мяса, других продуктов и сырья животного происхождения;

· наличие и состояние скотомогильников, биотермических ям, трупосжигательных печей, утильзаводов;

· меры по охране обслуживающего персонала от заражения зооантропонозами (ветеринарно-просветительная работа, инструктаж, плановые диагностические медицинские осмотры и исследования, прививки, обеспечение средствами личной профилактики и гигиены, ведение соответствующей документации).

4. Характеристика противоэпизоотических мероприятий в неблагополучном хозяйстве:

§ характеристика данной вспышки (дата появления первых случаев заболевания, дата и метод установления диагноза, предполагаемый источник возбудителя, возможные пути распространения болезни; число заболевших, павших и вынужденно убитых животных по дням, декадам и месяцам; распределение зарегистрированных случаев по характеру течения болезни и ее клиническому проявлению; патологоанатомические изменения и т. д.);

§ дата введения ограничений (карантина), наличие и анализ выполнения календарного плана мероприятий по ликвидации болезни;

§ методы утилизации (уничтожения) трупов животных;

§ условия вынужденного убоя, методы обезвреживания продуктов убоя;

§ число охранно-карантинных постов, их размещение, оборудование и функционирование;

§ количество изолированного скота, дата и условия изоляции;

§ лечение (специфическое, патогенетическое, симптоматическое) и его эффективность;

§ текущая дезинфекция, дезинсекция и дератизация (дата, количество, вид и способ применения средств и препаратов для указанных целей);

§ выделение обслуживающего персонала, обеспечение его дополнительной спецодеждой и спецобувью, инструктаж по вопросам охраны труда и мерам личной профилактики, профилактические прививки;

§ способы обеззараживания продуктов животноводства (мяса, молока, шкур, шерсти и т. д.);

§ вид биопрепарата и его характеристика; дата, способ и объем вынужденной иммунизации животных;

§ ветеринарно-просветительная работа;

§ дата последнего случая выздоровления (падежа, вынужденного убоя) животных; результаты клинического осмотра и контрольных лабораторных исследований;

§ закрепительные мероприятия (механическая очистка и заключительная дезинфекция);

§ дата снятия карантина (ограничений).

5. Дополнительные исследования, проведенные комиссией:

результаты клинического осмотра, патологоанатомического вскрытия трупов павших или туш убитых с диагностической целью животных, гематологических, бактериологических и других исследований.

6. Выводы (заключение):

соответствие условий кормления, содержания и эксплуатации животных, а также состояния ветеринарно-санитарных объектов предъявляемым требованиям;

правильность диагноза болезни, предполагаемые источники, факторы и пути передачи возбудителя;

оценка эффективности проведенных до дня составления акта профилактиче­ских и противоэпизоотических мероприятий.

Предложения

Основаны на выводах комиссии; предложения формулируют с учетом требований действующих правил (инструкций) и местных условий. Подписи членов комиссии.

Результаты эпизоотологического обследования как эпизоотического

очага, так и неблагополучного пункта оформляют в виде

соответствующего акта по следующей схеме:

1. Дата составления акта; название хозяйства и его адрес; кто, в какой период и с какой целью обследовал хозяйство; географическое положение и топографические особенности хозяйства, его общая характеристика.

2. Мероприятия, направленные на повышение общей резистентности организма.

3. Технология выращивания и эксплуатации животных; наличие в хозяйстве изоляторов, карантинных помещений; порядок утилизации трупов.

4. Система профилактических мероприятий (соблюдение правил профилактического карантина вновь поступающих в хозяйство животных, дата и вид профилактических прививок, схема иммунизации и применяемые вакцины, акты, подтверждающие проведение прививок, дезинфекционные, дератизационные и дезинсекционные мероприятия).

5. Благополучие по инфекционным болезням окружающих хозяйств, наличие экономических и хозяйственных связей с ними.

6. Подробная эпизоотологическая, клиническая, патологоанатомическая характеристика появившейся болезни, ее дифференциальная диагностика. Динамика заболеваемости; кто и каким методом установил диагноз; зарегистрированы ли ранее случаи того же заболевания вэтой местности; нет ли данных, указывающих на периодичность эпизоотии; противоэпизоотические мероприятия, назначенные с момента появления заболевания.

7. Предполагаемый источник возбудителя инфекции (дать свое заключение о причинах вспышки, путях заноса и распространения инфекции, условиях, благоприятствующих ее распространению).

8. Тяжесть течения эпизоотии: заболеваемость, смертность и летальность.

Первым важнейшим эпизоотологическим показателем является заболеваемость. Термин заболеваемость применяется в двух значениях: в широком и узком смысле. В широком смысле заболеваемость представляет собой всю совокупность заболеваемости инфекционными болезнями на ферме, в хозяйстве, районе и т. д. В этом смысле данный термин применяется, например, в выражении «Анализ заболеваемости». В узком смысле этот термин обозначает заболеваемость по одной конкретно взятой инфекционной болезни, выраженной в определенных статистических показателях. В этом смысле заболеваемость является основным показателем интенсивности эпизоотического процесса. Структура показателя заболеваемости при этом определяется суммой всех случаев заболеваний данной инфекционной болезнью животных за определенный период, разделенной на численность животных данного вида в хозяйстве.

При анализе заболеваемости в небольших хозяйствах в качестве стандартного показателя берут 100 животных, в крупных хозяйствах таким стандартным показателем может быть 1000, 10 000 и 100 000 животных.

Соответственно с изложенным заболеваемость вычисляют по формуле:

Х =А/В*1000

где X — показатель заболеваемости; А — число заболевших; В — общее число восприимчивых животных; 1000 — стандартный показатель, указывающий количество животных в хозяйстве (комплексе).

Единого периода времени для исчисления заболеваемости нет. Поэтому в практике поступают по-разному, в зависимости от характера болезни. Здесь, видимо, следует учитывать сезонность, остроту течения болезни, систему содержания животных и другие показатели.

Рассчитать показатель заболеваемости для животных нескольких видов нельзя, так как характер эпизоотического процесса при одной и той же болезни имеет свои особенности у животных разных видов. При сравнении показателей заболеваемости необходимо всегда брать одинаковые отрезки времени.

Вторым важным эпизоотологическим показателем является смертность от инфекционных болезней. Статистический показатель смертности вычисляют отношением числа павших животных от какой-то определенной болезни за год к числу поголовья, приведенному к некоторому стандарту. За стандартный показатель берут цифру в зависимости от величины объекта по чис­ленности животных: 1000, 10 000, 100 000.

Показатель смертности (%) вычисляют по формуле:

Х=А/С *1000

где X — показатель смертности; А— число животных, павших от данной болезни; С — численность восприимчивых животных; 1000 — стандартный показатель, указывающий на количество животных в хозяйстве (комплексе).

Третьим эпизоотологическим показателем является смертельность, или летальность. Это отношение числа павших от этой болезни животных к числу заболевших. Процент смертельности вычисляют по формуле:

Х=С/А *100

где X—показатель смертельности; С — число павших животных; А — число заболевших животных.

Все три рассмотренных показателя характеризуют интенсивность эпизоотического процесса и поэтому называются интенсивными показателями.

К числу статистических показателей эпизоотического процесса следует отнести также пораженность. Особое значение этот показатель имеет для хронических инфекций. Он характеризует степень пораженности стада на определенное время, установленную с помощью иммунологических реакций. Процент пораженности животных вычисляют по формуле:

Х=Е/N*100

где X — показатель пораженности; Е — число больных животных на определенный день; N — численность поголовья.

В эпизоотологии широко используется понятие «неблагополучный пункт». Под этим понимают населенный пункт со всеми принадлежащими ему угодьями, в котором были случаи заболевания и сохранился источник возбудителя инфекции.

Статистически определяется доля неблагополучных пунктов, т. е. отношение неблагополучных пунктов по болезни к общему числу населенных пунктов на определенной территории.

Например, в районе А вспышки сибирской язвы регистрировали в 1970 и 1973 гг., а в районе Б — в 1971, 1972, 1973 гг.; эпизоотическую ситуацию в обоих районах учитывали с 1968 по 1978 г. (за 10 лет). В этом случае для района А индекс эпизоотичности составляет 2:10= 0,2; а для района Б — 3 : 10 = 0,3.

2.Динамика эпизоотии (приложить план хозяйства с указанием движения эпизоотии по отдельным помещениям, фермам и т.д.); эффективность противоэпизоотических мероприятий.

Заключение должно содержать окончательный диагноз с указанием источника возбудителя инфекции и путей его распространения; оценку эффективности назначенных оздоровительных и профилактических мероприятий.

Предложения вносят в дополнение к уже назначенным мероприятиям или составляют новый план оздоровительных мероприятий применительно к данной эпизоотии.

Для обработки данных текущего учета требуется:

1) вычисление средних показателей;

2) группировка данных;

3) составление вариационных рядов и их выравнивание;

4) определение коэффициента корреляции между переменными величинами;

5) определение достоверности и уровня значимости полученных результатов.

Задания для самостоятельной работы: 1. Составить акт эпизоотологического обследования хозяйства. 2. Дать определение терминам: эпизоотический очаг, угрожаемая зона.

ЛПЗ №7

Тема: Биологические препараты, применяемые для профилактики,



Дата добавления: 2020-11-18; просмотров: 1718 | Нарушение авторских прав | Изречения для студентов


Читайте также:

Рекомендуемый контект:

Поиск на сайте:

© 2020-2020 lektsii.org - Контакты - Последнее добавление
Ген: 0.012 с.

§

Лекции.Орг

Цель занятия: изучить биологические препараты, применяемые для профилактики диагностики и лечения инфекционных болезней сельскохозяйственных животных.

Материалы и оборудование: таблица классификации вакцин, вакцины, сыворотки аллергены, антигены, бактериофаги.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

Важное место в общем комплексе противоэпизоотических мероприятий занимает специфическая профилактика инфекционных болезней. Для этого используют биологические препараты.

Биологические препараты — средства биологического происхождения, применяемые в профилактических, диагностических и лечебных целях. Промышленность выпускает также и стимулирующие биопрепараты: иммуностимуляторы, кормовые антибиотики, гормоны, витамины.

Средства иммунопрофилактики. К ним относят вакцины, глобулины, сыворотки. Основные показатели хорошего качества всех профилактических препаратов — стерильность или чистота, безвредность, допустимая степень вирулентности, антигенная активность и иммуногенность, эпизоотическая эффективность.

Вакцинаминазывают биологические препараты, получаемые из ослабленных, убитых возбудителей соответствующих болезней, комплекса их антигенов или продуктов жизнедеятельности. Введение таких препаратов вызывает образование специфических антител и стимулирует другие защитные механизмы.

Штаммы микроорганизмов, применяемые для изготовления вакцин, должны быть классифицированы, клонированы и представлять собой однородную популяцию микроорганизмов с характерными морфологическими, биохимическими и антигенными признаками.

Предлагаем ознакомиться  Бюджетный террариум для эублефаров (и не только) | Пикабу

Различают вакцины:

Живые вакцины содержат культуру микроорганизмов, сохранивших высокую иммуногенность с генетически закрепленной пониженной вирулентностью.

Их получают методом направленного изменения свойств возбудителя под воздействием внешней среды (вакцины против сибирской язвы, туберкулеза, бруцеллеза) или путем пассажей через организм невосприимчивых животных (вакцины против бешенства, рожи свиней).

Живые вакцины наиболее перспективны для ветеринарной практики, так как иммунитет после их применения образуется, как правило, раньше и характеризуется большей напряженностью и длительностью.

Инактивированные вакцины содержат культуру микроорганизмов определенного вида, обезвреженных действием физико-химических факторов (высокая температура, ультрафиолет, фенол, формалин) и утративших способность к репродуцированию (без грубого разрушения клетки микроорганизма, с сохранением иммуногенных свойств возбудителя). Инактивированные вакцины по иммуногенности уступают живым, поэтому их вводят в больших дозах и многократно. Чтобы повысить иммунологическую эффективность инактивированных вакцин, используют депонирующие вещества (адъюванты), которые по механизму действия на антиген делят на сорбирующие и эмульгирующие.

Анатоксины — вид вакцин, применяемых для активной профилактики токсикоинфекций животных.

Получают методом обезвреживания бактерийных экзотоксинов 0,3-0,4%-м формалином с выдерживанием при 38-40 °С в течение трех-четырех недель. Анатоксины стимулируют синтез антитоксинов, которые, нейтрализуя экзотоксины возбудителя, не оказывают губительного действия на него самого. Широко используют поливалентный анатоксин против клостридиозов овец — инфекционной энтеротоксемии, брадзота, некротического гепатита, злокачественного отека овец и дизентерии ягнят.

Вакцины нового поколения — субъединичные, генно-инженерные — созданы с помощью методов биотехнологии.

По технологии изготовления вирусные вакцины делят на:

- тканевые культуральные - изготовленные из различных тканей животных, организм которых был использован в качестве среды размножения возбудителя

- эмбриональные —.изготовленные из эмбрионов, которые были использованы в качестве среды размножения возбудителей.

В зависимости от примененного инактиватора все вакцины подразделяют на

- феноловые

- формоловые

- спиртовые,

-гретые.

В зависимости от от добавленного адъюванта на

- квасцовые (адсорбированные на алюмокалиевых квасцах),

-гидроокисьалюминиевые

-масляные.

В зависимости от количества антигенов вакцины подразделяют на:

- моновалентные — содержащие один антиген одного штамма (серотипа, биотипа) возбудителя данной болезни;

- поливалентные — содержащие антигены различных серотипов (биотипов, штаммов) возбудителя данной болезни;

- ассоциированные — содержащие антигены возбудителей нескольких заболеваний;

- аутогенные — приготовленные из штамма микроорганизма, выделенного от больного животного, и для него же предназначенные.

Кроме того, выпускают вакцины жидкие и сухие.

Сухие вакцины изготовленные в основном из живых слабоустойчивых штаммов, высушенные в условиях глубокого вакуума после предварительного замораживания (лиофилизация) или другим методом.

Прививки бывают профилактические (плановые) и вынужденные (при угрозе заноса возбудителя инфекции в хозяйство или появлении в хозяйстве инфекционной болезни).

Противопоказаниями против прививок служат: наличие в хозяйстве остроинфекционных болезней, а также переболевших животных (реконвалесцентов), истощенных или животных с повышенной температурой тела; неблагоприятные погодные условия; стресс-факторы; последняя стадия беременности, первые 2 нед. после родов; прививки другой вакциной.

Лечебные и диагностические препараты. К средствам специфической терапии относят гипериммунные сыворотки (по механизму действия делят на антитоксические, антибактериальные и противовирусные), сыворотки реконвалесцентов, иммуноглобулины, бактериофаги, антибиотики, пробиотики. Для диагностических целей в ветеринарии используют сыворотки, иммуноглобулины, аллергены, бактериофаги, антигены.

Антибактериальные сыворотки воздействуют непосредственно на возбудителя заболевания, подавляя его жизнедеятельность. Биопромышленность нашей страны выпускает сыворотки против сибирской язвы, рожи свиней, пастереллеза и др.

Антитоксические сыворотки содержат антитела (иммуноглобулины), способные специфически связывать и нейтрализовывать токсины бактериального, растительного и животного происхождения. В ветеринарии применяют антитоксические сыворотки против анаэробной дизентерии и инфекционной энтеротоксемии овец, столбняка, ботулизма, злокачественного отека и др.

Противовирусные сывороткивысокоэффективны, особенно в начале заболевания. Биопромышленность выпускает сыворотки против болезней крупного рогатого скота (ринотрахеит, вирусная диарея и др.), собак (чума, гепатит, энтерит).

Лечебные, профилактические и диагностические гипериммунные сыворотки обычно получают от лошадей, иногда — от волов, свиней. После окончания гипериммунизации, когда в сыворотке крови животного установлено максимальное содержание специфических антител, у животного берут кровь (чаще на 7-10-й день после последнего введения антигена). Кровь сепарируют, чтобы получить нативную плазму (сыворотку), которую отстаивают и стабилизируют (консервируют), затем концентрируют, стандартизируют, стерилизуют фильтрацией и при необходимости прогревают.

После производственного контроля каждую серию сыворотки проверяют на стерильность, безвредность, специфическую активность.

На бактериальную стерильность контролируют высевами из препарата на специальные питательные среды (МПА, МПБ с глюкозой, МППБ под маслом и агар Сабуро или среду Чапека, чтобы исключить контаминацию грибковой микрофлорой).

Безвредность проверяют на лабораторных животных в соответствии с нормативной документацией по изготовлению сыворотки. Животные должны оставаться здоровыми, без заметной местной и общей реакции в течение 10 дней.

Специфическую активность определяют в реакциях биологической и серологической нейтрализации. Реакцию биологической нейтрализации ставят на восприимчивых лабораторных животных, эмбрионах птиц или культурах клеток. Для серологического тестирования применяют РН, РДП в агаровом геле, РТГА, РСК, РНГА и др. с использованием в качестве контроля заведомо известных позитивных и негативных сывороток (референс-препаратов).

Кроме того, проверяют превентивные свойства лечебных и профилактических сывороток на восприимчивых животных. Чтобы определить активность сыворотки, ее вводят животным внутрибрюшинно, подкожно или внутримышечно. Затем через 20-24ч инъецируют подтитрованную дозу вирулентного контрольного штамма соответствующего микроорганизма. Подопытные животные должны оставаться здоровыми не менее 14 дней, контрольные- погибнуть или заболеть.

Сыворотки реконвалесцентов(противовирусные и антибактериальные) получают от животных, переболевших инфекционной болезнью без осложнений. Сыворотку рекомендуют получать и использовать в условиях одного хозяйства. Кровь от животных-доноров можно брать непосредственно в хозяйстве или на мясокомбинате во время их убоя. Сыворотки реконвалесцентов применяют при парагриппе, вирусной диарее крупного рогатого скота, сальмонеллезе, пастереллезе и т. д.

Лечебные глобулины (против болезни Ауески сельскохозяйственных животных и пушных зверей, сибирской язвы) представляют собой водный раствор α- и β-глобулинов сыворотки крови животных. Иммуноглобулины получают различными методами (риваноловым, спиртовым и путем осаждения сульфатом аммония) из гипериммунных сывороток.

Бактериофаги - вирусы, которые проникают в бактериальную клетку, размножаются в ней и лизируют ее с выходом фаговых частиц в окружающую среду. Бактериофаги способны лизировать только определенные микроорганизмы. Введенный в организм бактериофаг сохраняется в нем 5-7 дней (прием бактериофага не может заменить вакцинацию). В нашей стране выпускают бактериофаги против сальмонеллеза или колибактериоза телят, пуллороза - тифа птиц.

Для идентификации возбудителей болезней в бактериальных культурах и свежем патологическом материале биопромышленность выпускает: сибиреязвенный бактериофаг К—ВИЭВ, «Гамма—МВА», ВНИИВВиМ, лиофилизированные бактериофаги для идентификации возбудителей листериоза, стафилококковые — для типирования штаммов; бруцеллезный бактериофаг.

Диагностические сыворотки используют не только для идентификации возбудителя инфекции, но и для определения его типа и варианта. Производство диагностических сывороток строго регламентировано, что обусловливает их высокое качество и стандартность. В большинстве случаев продуцентами названных сывороток служат лабораторные животные (кролики, морские свинки), петухи и редко — лошади.

Глобулин диагностический (для диагностики бешенства в прямом методе иммунолюминесцентной микроскопии) - это чистая фракция γ-глобулина, выделенного из высокоактивной моноспецифической антирабической сыворотки лошадей и химически связанного с изотиоцианатом флуоресцина.



Дата добавления: 2020-11-18; просмотров: 492 | Нарушение авторских прав | Изречения для студентов


Читайте также:

Рекомендуемый контект:

Поиск на сайте:

© 2020-2020 lektsii.org - Контакты - Последнее добавление
Ген: 0.004 с.

§

Лекции.Орг

Цель занятия: изучить основные принципы организации общих и специальных профилактических мероприятий.

Материалы и оборудование: эпизоотологический макет, таблицы, набор диагностикумов, вакцин и сывороток.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии или хозяйство.

Профилактикапредставляет собой совокупность организационно-хозяйственных и специальных мероприятий, направленных на предупреждение возникновения и распространения инфекционных болезней.

Профилактические мероприятия, составляющие основу противоэпизоотической системы, подразделяют на общие и специальные.

Общая профилактика— это комплекс организационно-хозяйственных и ветеринарно-санитарных мер, направленных на профилактику всех инфекционных болезней, которые носят постоянный характер. В нее входят:

- периодические (не реже 1 раза в мес.) клинические осмотры животных, диспансеризация (2 раза в год), своевременное выявление и изоляция больных и подозрительных но заболеванию животных;

Диспансеризация животных — система плановых диагностических, лечебно-профилактических и хозяйственно-организационных мероприятий, направленных на выявление субклинических форм заболеваний, их профилактику и лечение.

Диспансеризацию проводят 2 раза в год: осенью — при переводе животных на стойловое содержание и весной — в конце стойлового периода.

Диспансеризация включает в себя: клиническое обследование животных, лабораторный анализ крови, молока, мочи, кормов, оценку условий кормления и содержания. Полученные при диспансеризации данные сравнивают с нормальными показателями, чтобы определить состояние здоровья поголовья. По окончании диспансеризации оформляют акт.

- чистка и дезинфекция территорий (не реже 1 раза в год);

- закрытый тип работы крупных животноводческих предприятий, соблюдение принципа «пусто-занято»;

- организация контроля на станциях искусственного осеменения животных;

- контроль за состоянием пастбищ и их санация;

- контроль за содержанием, кормлением, поением и эксплуатацией животных;

- мероприятия по борьбе с переносчиками (дезинсекция и дератизация);

- контроль за перемещением животных;

- уборка и утилизация трупов, отходов животноводства и навоза.

- профилактический карантин всех вновь поступающих в хозяйство животных.

Карантинное помещение предварительно очищают механическим способом и дезинфицируют с обязательной лабораторной проверкой эффективности дезинфекции. В период профилактического карантина животных обрабатывают по определенной схеме.

Рекомендуемая схема обработки крупного рогатого скота

в период профилактического карантина

1-й день Прием, регистрация животных в журнале, клинический осмотр и термометрия

2...3-й день Санитарная обработка: туалет кожного покрова, расчистка копыт, обрезка рогов

5-й день Взятие проб кала для гельминтологического исследования

15-й день Туберкулинизация

18-й день Учет и оценка результатов туберкулинизации. Взятие крови для серологического (на бруцеллез, лейкоз, лептоспироз и другие болезни) и биохимического исследований

19-й день Дегельминтизация (в случае необходимости)

24-й день Вакцинация против сибирской язвы

29...30-й день Клинический осмотр и термометрия, санитарная обработка. Перевод животных в общее стадо.

В период карантина перегруппировки животных запрещены.

Характер действия общих профилактических мероприятий универсален для всех ИБ, поэтому данные мероприятия должны проводиться повсеместно и постоянно.

Специфическая профилактика— специальная система мер, направленных на предупреждение появления конкретных инфекционных болезней, тем создания специфического иммунитета к ней. Характер специальных профилактических мероприятий обусловлен особенностями инфекционной болезни, эпизоотической обстановкой хозяйства и окружающей территории.

К специальным мероприятиям относят:

- специальные диагностические исследования (например, аллергическую пробу на туберкулез, серологическую диагностику бруцеллеза, лейкоза и т. д.);

- иммунопрофилактику — создание иммунитета с помощью биологических препаратов (вакцин, сывороток, глобулинов).

Самый распространенный вид специфической профилактики — активная иммунизация, которая достигается путем введения животным вакцин и анатоксинов. Поголовье иммунизируют в благополучных хозяйствах согласно плану противоэпизоотических мероприятий, чтобы защитить от конкретной инфекционной болезни, а также вынужденно в неблагополучных хозяйствах.

Профилактическую вакцинацию широко применяют в живот­новодстве нашей страны, поскольку Россия, во-первых, граничит со многими странами, неблагополучными по ряду опасных ИБ; а во-вторых, имеет широкие экономические связи со странами ближнего и дальнего зарубежья. В частности, в РФ обязательны прививки против ряда болезней, вне зависимости от угрозы заражения: против сибирской язвы сельскохозяйственных животных, чумы и рожи свиней, ящура парнокопытных в буферных зонах и др.

С профилактической целью животных прививают ранней весной до выгона на пастбище или поздней осенью; вынужденно — в любое время года.

Подготовка плановой вакцинации начинается с клинического осмотра всего поголовья (осматривают за 1 сут. до обработки). Животных истощенных, находящихся в последнем периоде беременности, а также с признаками других болезней метят, в списке указывают причины, по которым они не допущены к вакцинации, и определяют характер их дальнейшей эксплуатации.

Готовят инструменты, необходимые для вакцинации, спецодежду (резиновые сапоги, халаты, фартуки, нарукавники), мыло, полотенце и т. п. Перед началом работы все инструменты стерилизуют кипячением в течение 20 мин с момента закипания воды, а после работы — 30 мин. Иглы после работы промывают, стерилизуют и высушивают.

Место и способ введения вакцины выбирают в соответствии с наставлением по ее применению. Поле инъекции обязательно депилируют и дезинфицируют.

Очень важно позаботиться о рабочем месте: создать условия для фиксации животных (станок, раскол, загон) и правильно подготовить препараты и инструменты.

Метод групповой вакцинации включает в себя:

- Энтеральная, или пероральная, иммунизация — введение вакцин с кормом или питьевой водой — существенно сокращает затраты труда. При этом методе входными воротами служат полость рта, пищевод, тонкий и толстый отделы кишечника: антиген проникает через слизистую оболочку этих участков пищеварительного тракта в иммунокомпетентные клетки организма.

В производственных условиях пероральную вакцинацию применяют против болезни Ньюкасла кур, трансмиссивного гастроэнтерита свиней и при иммунизации лисиц против бешенства.

- Аэрозольная, или респираторная, иммунизация — введение вакцины в дыхательные пути в форме аэрозоля. Достоинства этого метода: удается быстро создать более напряженный, чем при других видах вакцинации, иммунитет; формируется не только общая, но и местная невосприимчивость организма к инфекции.

Аэрозольные камеры должны быть герметичными, с тем чтобы в них могла установиться нужная температура (12... 15 °С) и влажность (50...90 %).

Для иммунизации живыми вакцинами используют специальные распылители — ДАГ, САГ, ТАН, ПАГ и др.

Всеми работами, связанными с аэрозольной вакцинацией, руководит ветеринарный врач. Лица, участвующие в аэрозольных обработках, надевают хлопчатобумажные комбинезоны, резиновые сапоги, колпаки; имеют при себе защитные очки, респираторы или ватно-марлевые повязки. После начала распыления вакцины и до окончания проветривания помещения входить разрешается только на короткое время, чтобы проверить правильность работы распылителя. При этом обязательно следует надевать защитные очки и респираторы.

Оформление документов на вакцинацию

и наблюдение за привитыми животными

Закончив вакцинацию, оформляют документы: акт о вакцинации (форма 4) и ведомость. Акт подписывают ветеринарные специалисты, участвующие в вакцинации, и работники фермы — зоотехник, заведующий. Акт является юридическим документом. К нему прилагают опись невакцинированных животных с указанием причины отмены иммунизации.

За привитыми животными наблюдает ветеринарный специалист и отмечает все реакции организма (местные и общие). Если после вакцинации у животных возникли осложнения, например сильная местная реакция — отек, болезненность, повышенная температура или появились случаи падежа, прежде всего принимают меры против развития осложнений, а затем о факте сообщают на предприятие-изготовитель и во Всероссийский научно-исследовательский институт контроля, стандартизации, сертификации ветеринарных препаратов (ВГНИИКСС).

Форма 4

Акт

Хозяйство ________________

___________________ района

______________области, края

«___» _____________ 20___ г.

Составлен главным ветеринарным врачом ______________________________

(наименование хозяйства)

при участии _______________________________________________________

в том, что на ферме, отделении ____________________ с «___» ____________

по «___» ______________ 20___ г. нами проведена вакцинация ____________

(вид животных)

против ___________________________ в количестве _______________ голов.

Использована вакцина ______________________________________________

производства ______________________ биофабрики, серии _______________

изготовленная «___» ______________ 20__ г., № госконтроля _____________

срок годности _____________________________ 20___ г.

Вакцину вводили ________________ в дозе _____________. Место инъекции

обрабатывали __________________________________.

Всего израсходовано вакцины _______ л, спирта _____ л, ваты __________ г.

Главный ветврач хозяйства _________________

Ветврач отделения (фермы) _________________

Ветфельдшер ____________________________

Зоотехник _______________________________

Зав. фермой ______________________________

Задания для самостоятельной работы: 1. Оформить акт о вакцинации. 2. Рассчитать количество вакцины, необходимое для иммунизации поголовья. 3. Описать и охарактеризовать пероральный метод вакцинации.

ЛПЗ №9

Тема: Карантинные и ограничительные мероприятия в хозяйствах,



Дата добавления: 2020-11-18; просмотров: 1337 | Нарушение авторских прав | Изречения для студентов


Читайте также:

Рекомендуемый контект:

Поиск на сайте:

© 2020-2020 lektsii.org - Контакты - Последнее добавление
Ген: 0.007 с.

§

Лекции.Орг

Цель занятия: научиться правильно оценивать эпизоотическую ситуацию и в соответствии с этим определять стратегию и тактику противоэпизоотических мероприятий.

Материалы и оборудование: эпизоотологический макет, таблицы и ветеринарные документы.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Ликвидировать инфекционную болезнь удается с помощью комплекса противоэпизоотических мероприятий, основанных на достоверном диагнозе и всестороннем эпизоотологическом обследовании. По результатам последнего составляют план ликвидации возникшей эпизоотии, включающий в себя следующие основные разделы: карантинные или ограничительные мероприятия, обеззараживание источника возбудителя инфекции, повышение общей и специфической устойчивости животных, находящихся под угрозой заражения.

Конкретный перечень оздоровительных мероприятий, назначаемых в неблагополучном хозяйстве, определен правилами (инструкциями), разработанными для каждой инфекционной болезни, и сложившейся эпизоотической обстановкой.

Мероприятия в неблагополучном пункте. Хозяйство (ферму, населенный пункт), где отмечены вспышки инфекционной болезни, объявляют неблагополучным и принимают меры по ликвидации эпизоотического очага.

При любой инфекционной болезни и развитии эпизоотического процесса необходимо изолировать источник возбудителя инфекции. С этой целью накладывают карантин или ограничения.

Карантин— это система временных мероприятий, состоящих в строгой изоляции эпизоотического очага и неблагополучного пункта.

Цель карантина — предупредить распространение инфекционной болезни за пределы первичного очага.

Установление ограничительных мероприятий (карантина) на территории субъекта РФ регулируется статьей 17 закона РФ «О ветеринарии» и на основании положения о ветеринарной службы субъекта РФ (Положения об управлении ветеринарии Брянской области).

В хозяйствах, где введен карантин, запрещено перегруппировывать животных без согласования с ветеринарными специалистами; ввозить и вывозить животных, восприимчивых к данной болезни; заготовлять и вывозить продукты и сырье животного происхождения, концентрированные и грубые корма; проезжать через эпизоотический очаг (неблагополучный пункт), устраивать ярмарки, базары.

Чтобы установить границы карантинной территории, учитывают характер возбудителя, способы его выделения из организма и механизмы передачи, восприимчивость животных, природные условия. В первую очередь необходимо правильно определить границы эпизоотического очага. Чем больше территория очага, численность сконцентрированных на ней животных и других объектов, тем сложнее выполнить весь комплекс необходимых мероприятий. Определяя границы карантинной территории, следует стремиться к их сужению. Однако если в границы эпизоотического очага не будут включены объекты, где находится источник возбудителя инфекции и действуют механизмы его передачи, то сохранится угроза дальнейшего развития эпизоотии и ветеринарно-санитарные мероприятия окажутся неэффективными.

Перечень заразных, в том числе особо опасных, болезней животных (Приложение 1), по которым могут устанавливаться ограничительные мероприятия (карантин), утверждается федеральным органом исполнительной власти в области нормативно-правового регулирования в ветеринарии (Министерством сельского хозяйства).

При некоторых особо опасных инфекциях вокруг объекта карантина устанавливают угрожаемую зону, которая определяется территориальной близостью к эпизоотическому очагу и наличием с ним хозяйственно-экономических связей, с учетом степени и широты распространения болезни.

В случае появления угрозы возникновения и распространения заразных болезней животных на территориях двух и более субъектов Российской Федерации решением министерства сельского хозяйства могут быть установлены ограничительные мероприятия (карантин) на территориях двух и более субъектов Российской Федерации.

В случае появления угрозы возникновения и распространения заразных болезней животных на территории одного субъекта Российской Федерации высшее должностное лицо (руководитель высшего исполнительного органа государственной власти субъекта Российской Федерации — например, Губернатор Брянской области) на основании представления руководителя органа исполнительной власти в области ветеринарии субъекта Российской Федерации (например, начальника управления ветеринарии Брянской области), принимает решение об установлении ограничительных мероприятий (карантина).

Копия представления руководителя органа исполнительной власти субъекта Российской Федерации, одновременно с направлением данного представления высшему должностному лицу субъекта Российской Федерации направляется в федеральный орган исполнительной власти в области нормативно-правового регулирования в ветеринарии (Министерство сельского хозяйства) и федеральный орган исполнительной власти в области ветеринарного надзора (Федеральная служба ветеринарного и фитосанитарного надзора (Россельхознадзор)).

В случае установления ограничительных мероприятий (карантина) копия указанного решения направляется в течение дня, следующего за днем его принятия.

В случае появления угрозы возникновения и распространения заразных, за исключением особо опасных, болезней животных решение об установлении ограничительных мероприятий (карантина) может быть также принято руководителем органа исполнительной власти субъекта Российской Федерации в области ветеринарии (например, начальником управления ветеринарии Брянской области). Решение принимается на основании представления главного госветинспектора района (города). При этом, в случае выявления очагов заразных болезней животных, в течение дня, следующего за днем их выявления, госветинспектор района направляет в управление ветеринарии представление об установлении ограничительных мероприятий (карантина) с проектами решения об установлении ограничительных мероприятий (карантина) (форма №5) и плана специальных мероприятий по ликвидации очага по следующей форме:

№ п/п Наименование мероприятия Срок исполнения Ответственный
за исполнение
     
     

В решении об установлении ограничительных мероприятий (карантина) должен быть указан перечень ограничений на оборот животных, продуктов животноводства, кормов и кормовых добавок, а также срок, на который устанавливаются ограничительные мероприятия (карантин).

Для оперативного руководства деятельностью юридических и физических лиц по предупреждению распространения и ликвидации очагов заразных болезней животных и координации указанной деятельности органы исполнительной власти субъектов Российской Федерации создают в установленном порядке специальные комиссии.

Высшее должностное лицо субъекта Российской Федерации (Губернатор) обеспечивает осуществление предусмотренных ветеринарным законодательством Российской Федерации специальных мероприятий по ликвидации очагов заразных болезней животных в случае установления ограничительных мероприятий (карантина) на территории субъекта Российской Федерации.

Ответственность за соблюдение карантинных правил несут руководители хозяйств и органы местной власти, ответственность за своевременное выполнение специальных мероприятий - ветеринарные специалисты, обслуживающие хозяйства, и главные ветеринарные врачи районов.

Предлагаем ознакомиться  Как заменить воду в аквариуме? Особенности, способы, инструменты, объем и частота обновления

Карантин снимают после полной ликвидации инфекционной болезни с учетом длительности инкубационного периода заболевания, после заключительных ветеринарно-санитарных мероприятий.

Решение об отмене ограничительных мероприятий (карантина) по заразным, в том числе особо опасным болезням животных, принимается в таком же порядке, как и установление, после выполнения плана специальных мероприятий по ликвидации очага.

При некоторых особо опасных инфекционных болезнях (ящур, африканская чума свиней и др.) после снятия карантина в хозяйстве на определенный срок вводят ограничения, в частности, в отношении использования продуктов животноводства, помещений, навоза, пастбищ и т. д.

Ограничения накладывают в эпизоотическом очаге и неблагополучном пункте при инфекционных болезнях, не имеющих тенденции к широкому распространению. Порядок введения и снятия ограничений такой же, как и при карантине, оздоровительные мероприятия назначают согласно действующим инструкциям.

Чтобы установить характер течения болезни, предупредить ее дальнейшее развитие и выявить скрыто больных животных, в эпизоотическом очаге и неблагополучном пункте прибегают к тщательному клиническому обследованию всех животных, восприимчивых к данной болезни. Одновременно при необходимости определенное число животных исследуют и другими методами (например, серологическим). По результатам исследований животных разделяют на три группы:

- явно больные;

- подозрительные по заболеванию с неясными симптомами болезни или повышенной температурой тела;

- подозреваемые в заражении, клинически здоровые, но восприимчивые к данной инфекции и содержавшиеся вместе с больными животными.

Группу явно больных животных немедленно изолируют от общего стада, лечат или отправляют на вынужденный убой (уничтожают).

Животных, подозрительных по заболеванию, так же как и явно больных, немедленно изолируют, ежедневно исследуют клинически, уточняют диагноз и лечат, если лечение эффективно или не запрещено.

Чтобы предупредить распространение болезни, животных, подозреваемых в заражении инфекцией, против которой разработана специфическая профилактика, иммунизируют вначале пассивно, а впоследствии активно. В случае заболеваний, против которых средства иммунизации не разработаны, за животными устанавливают постоянное ветеринарное наблюдение с диагностическими исследованиями.

Мероприятия в угрожаемой зоне. Местные органы власти, руководители хозяйств, ветеринарные специалисты принимают меры против возникновения заболевания среди животных. Эти меры включают в себя: охрану хозяйств от заноса возбудителя болезни, прекращение хозяйственных связей с неблагополучным пунктом, учет и иммунизацию всех животных, восприимчивых к данной болезни, ветеринарно-санитарный надзор за вывозом животных, продуктов и сырья животного происхождения, более строгое выполнение общих профилактических и санитарных мероприятий.

Задания для самостоятельной работы: 1. Создание чрезвычайной комиссии и наложение карантина на хозяйство. 2. Составить план оздоровительных и профилактических мероприятий. 3. Написать проект постановления о наложении карантина при возникновении яшура.

ЛПЗ 10.

Тема: Комплексный метод лечения животных, больных



Дата добавления: 2020-11-18; просмотров: 1431 | Нарушение авторских прав | Изречения для студентов


Читайте также:

Рекомендуемый контект:

Поиск на сайте:

© 2020-2020 lektsii.org - Контакты - Последнее добавление
Ген: 0.003 с.

§

Лекции.Орг

Ветеринарные врачи располагают широким набором препаратов для специфического лечения животных. Лечение животных, больных инфекционными болезнями, рассматривают как мероприятие, снижающее экономический ущерб. Оно должно быть экономически выгодным. Если нельзя рассчитывать на полное выздоровление животного и сохранение его продуктивности, целесообразнее убить больное животное на мясо. Длительное лечение показано, как правило, в отношении высокопродуктивных и ценных племенных животных. Основные средства и методы лечения при ИБ включают в себя следующие: вакцинотерапия, серотерапия, фаготерапия, интерфероны, пробиотики, иммуномодуляторы, антибактериальные препараты, антисептики.

Вакцинотерапия. Этот метод используют весьма редко, так как вакцин, обладающих терапевтическим действием, достаточно мало. Хорошо известен лечебный эффект вакцин против дерматомикозов (ЛТФ-130, СП-1, Ментавак и др.), некробактериоза и копытной гнили овец, а также стафилококковых и стрептококковых анатоксинвакцин.

Серотерапия. Это широко распространенный метод лечения больных животных, известный еще до открытия эры антибиотиков. По способу получения антител, их составу и свойствам, средства серотерапии подразделяют на гипериммунные; реконвалесцентов; антитоксические, антибактериальные, противовирусные, смешанные; моновалентные, поливалентные.

Наиболее эффективными считают антитоксические сыворотки, содержащие антитоксические антитела (антитоксины), которые используют в основном при болезнях, вызываемых клостридиями (столбняк, ботулизм, энтеротоксемия и другие анаэробные инфекции). Эффективны также антибактериальные сыворотки, если они введены вовремя, при болезнях, сопровождающихся септицемией (сибирская язва, рожа и др.). Обычно мало эффективны сыворотки при хронических инфекциях, особенно если возбудитель - внутриклеточный паразит (микоплазмозы, риккетсиозы, некоторые вирусные болезни).

Иммуноглобулины (гаммаглобулины) - концентрированные антитела, выделенные из сывороток различными методами; средство успешно используют при сибирской язве, болезни Ауески, столбняке, ботулизме и др. К преимуществам иммуноглобулинов следует отнести:

- высокую концентрацию специфических антител;

- отсутствие балластных белков;

- меньшие, чем при использовании сывороток, дозы;

- сниженное анафилактогенное действие.

Фаготерапия. Бактериофаги в лечебных целях в ветеринарии используют в настоящее время весьма ограниченно. Выпускают бактериофаги против эшерихиоза телят, пуллороза (тифа) кур, сальмонеллеза и некоторых других кишечных инфекций.

Интерфероны. Интерфероны альфа- и бета-типов, природные и рекомбинантные характеризуются противовирусным действием;

Препараты на их основе (первый из этой группы - человеческий лейкоцитарный интерферон) применяют при комплексном лечении животных от вирусных болезней: генно-инженерный (рекомбинантный) интерферон - «Реаферон»; свиной лейкоцитарный интерферон с индуктором; лейкоцитарный интерферон КРС; «Миксоферон» - смесь генно-инженерных интерферонов, предназначенная для профилактики и лечения вирусных болезней животных; «Кинорон» - смесь генно-инженерных интерферонов и иммуномодуляторов - лимфокинов, получивший широкую известность при лечении вирусных болезней домашних животных - собак и кошек.

Пробиотики. Начиная с первых дней жизни кишечник животных заселяют разнообразные, в основном анаэробные микроорганизмы, выполняющие защитную функцию: бифидобактерии (до 95% всей популяции), лактобактерии, бактероиды, фузобактерии, эубактерии, клостридии, анаэробные и аэробные кокки, в меньшей степени - эшерихии, цитробактер, энтеробактер, протей, клебсиеллы. Эта микрофлора служит одним из факторов естественной резистентности.

Основные функции нормальной микрофлоры следующие:

- колонизационная резистентность (микрофлора препятствует заселению организма посторонними микроорганизмами);

- иммуномодулирующая;

переваривание и всасывание пищевых продуктов;

- детоксикация организма.

В настоящее время известно множество пробиотиков: создано уже четыре поколения препаратов: первыми из группы были АБК - ацидофильная бульонная культура и ПАБК - пропион-ацидофильная бульонная культура. Затем начали применять в основном препараты из лакто- и бифидобактерии (лактобактерии, бифидобактерии), а также на основе эшерихии (колибактерин, колипротектан-ВИЭВ), бацилл (споробактерин, бактисубтил, бактиспорин). Ряд пробиотиков сочетает в себе две и более культур (лакто-бифидобактерин, бификол, бифоцит, линекс, энтеробифидин). Позднее появились комплексные препараты (бифидумбактерин-форте сорбированный и др.); в качестве примера можно привести также препараты лактовит-К, бифацитобактерин, пробиоз АВП, эндобактерин, энтерацид СБА, протексин. Число внедряемых в ветеринарную практику пробиотиков растет из года в год.

Пробиотики не в состоянии в целом конкурировать по широте и эффективности с антибиотиками, однако у них есть ряд преимуществ перед последними:

- естественное происхождение препаратов;

- отсутствует риск развития резистентности микроорганизмов;

- можно использовать для животных на откорме при получении экологически чистой продукции;

- отсутствует период ограничений по использованию продукции после применения;

- отсутствует период длительного выведения из организма;

- не требуется особых условий хранения препаратов;

- можно применять беременным животным;

- сравнительно низкая стоимость.

Иммуномодуляторы (ИМ). Это вещества химической и биологической природы, обладающие специфическим и неспецифическим иммуностимулирующим и иммунокоррегирующим действием. Иммуномодуляторы разделяют на гетерологичные (различные по природе) и гомологичные (вырабатываемые самим организмом). В настоящее время ветеринарной наукой разработано для практических целей большое количество препаратов данной группы: гомологичные иммуномодуляторы - Т- и В-активины, тимолин, тимоген, гликопид (ГМДП), интерлейкины и пр; гетерологичные иммуномодуляторы - левамизол, нуклеинат-натрия, некоторые антибиотики.

Иммуномодуляторы применяют в основном при нарушениях функции иммунной системы (первичные или вторичные иммунодефицита).

Антибактериальные препараты. Препараты этой группы (антибиотики, сульфаниламиды, нитрофураны и др.), особенно антибиотики, как самые эффективные из всех антибактериальных средств, остаются на сегодняшний день, несмотря на недостатки, наиболее широко применяемыми (их используют также и при осложнениях вирусных инфекций). Существует множество различных классов антибиотиков, их изучают в курсе фармакологии.

Принципы рациональной антибактериальной терапии:

- точная диагностика болезни;

- правильный выбор препаратов и их сочетаний;

- правильный выбор дозы (концентрации);

- кратность, интервалы и длительность применения (сохранение терапевтических концентраций в течение курса лечения);

- правильный метод введения (характер всасывания и действия).



Дата добавления: 2020-11-18; просмотров: 514 | Нарушение авторских прав | Изречения для студентов


Читайте также:

Рекомендуемый контект:

Поиск на сайте:

© 2020-2020 lektsii.org - Контакты - Последнее добавление
Ген: 0.003 с.

§

Лекции.Орг

специальности «Ветеринария»

1. Предмет, задачи и методы эпизоотологии как науки. Связь эпизоотологии с другими науками.

2. Эпизоотология как наука, ее значение в ветеринарии. История изучения инфекционных болезней.

3. Инфекция ее формы и виды, инфекционная болезнь.

4. Возбудители инфекционных болезней и сущность их болезнетворного действия, факторы их патогенности. Значение микро –и макроорганизма в формировании инфекции.

5. Распространение патогенных микробов в организме животного.

6. Проявление и динамика инфекционной болезни, ее течение и формы проявления.

7. Естественный иммунитет и как он создается, факторы естественной резистентности.

8. Искусственный иммунитет. Виды искусственного иммунитета и его роль в системе профилактических мероприятий.

9. Значение состояния организма животного и влияние внешних факторов на возникновение и развитие инфекции

10. Аллергия и анафилаксия.

11. Практическое использование иммунологии.

12. Эпизоотический процесс – как он определяется, из чего складывается. Дать характеристику первого звена эпизоотической цепи.

13. Эпизоотический процесс – определение. Дать характеристику 2 и 3 –го звена эпизоотической цепи

14. Степень проявления эпизоотического процесса, факторы ее обуславливающие. Движущие силы эпизоотического процесса.

15. Динамика (стадийность), сезонность и периодичность эпизоотий.

16. Эпизоотический очаг. Виды эпизоотических очагов и их значение в возникновении эпизоотии.

17. Природная очаговость инфекционных болезней, структура и виды природных очагов.

18. Структура и виды природных очагов. Характер и значение эпизоотических связей между домашними и дикими животными.

19. Заражение и заболевание. Отчего зависит развитие, острота и тяжесть течения инфекционной болезни.

20. Номенклатура и классификация инфекционных болезней.

21. Основные задачи и принципы противоэпизоотических мероприятий.

22. Государственная система противоэпизоотических мероприятий.

23. Общие принципы терапии животных при инфекционных болезнях. Специфическая терапия и применяемые при ней препараты.

24. Схема изучения инфекционных болезней животных. Отличие инфекционных болезней от неинфекционных патологий.

25. Эпизоотологический мониторинг, его цели и составляющие.

26. Ветеринарный учет и отчетность в эпизоотологии.

27. Иммунологическая реактивность и иммунитет. Классификация иммунитета по происхождению.

28. Дайте характеристику клеточным и гуморальным факторам противоинфекционного иммунитета.

29. Эпизоотологическая классификация инфекционных болезней.

30. Формы взаимоотношений между микро – и макроорганизмами. Понятие об инфекции и инфекционной болезни.

31. Правила личной профилактики ветеринарных специалистов при проведении противоэпизоотических мероприятий и работе с заразным материалом.

32. Правила обращения с инфекционно-больными животными.

33. Методы диагностики инфекционных болезней животных.

34. Серологические реакции и организация массовых серологических исследований.

35. Техника проведения и учет результатов при внутрикожной туберкулинизации крупного и мелкого рогатого скота.

36. Техника проведения и учет результатов офтальмопробы при диагностике туберкулеза и сапа лошадей.

37. Техника проведения и учет результатов при внутрикожной туберкулинизации свиней, коз, овец, собак, пушных зверей, кур.

38. Аллергическая диагностика бруцеллеза у свиней: техника проведения и учет результатов исследований.

39. Правила взятия и пересылки патологического материала для лабораторных исследований. Оформление документов на отправляемый материал.

40. Эпизоотологическое обследование хозяйства: цели и задачи, сроки и последовательность проведения.

41. Средства иммунопрофилактики: живые, инактивированные вакцины, анатоксины, вакцины нового поколения, глобулины.

42. Лечебные и диагностические препараты: антибактериальные, антитоксические, противовирусные сыворотки.

43. Лечебные и диагностические препараты: сыворотки рековалесцентов, лечебные глобулины, бактериофаги.

44. Лечебные и диагностические препараты: диагностические сыворотки, глобулины, аллергены, антигены.

45. Требования, предъявляемые к биопрепаратам, правила их транспортировки и использования.

46. Общие и специальные профилактические мероприятия в хозяйствах, благополучных по инфекционным болезням животных. Индивидуальные и групповые способы иммунизации.

47. Комплекс противоэпизоотических мероприятий, проводимых в угрожаемой зоне.

48. Комплекс противоэпизоотических мероприятий, проводимых в неблагополучных пунктах.

49. Устройство и функционирование ветеринарно-санитарных объектов в животноводческих хозяйствах.

50. Комплексный метод лечения инфекционно-больных животных с использованием биопрепаратов.

51. Понятие о дезинфекции, ее задачи, виды и объекты дезинфекции. Требования, предъявляемые к дезинфицирующим средствам.

52. Химические дезинфицирующие средства (фенолсодержащие препараты и альдегиды) и показания для их применения.

53. Щелочи и кислоты, как препараты используемые для дезинфекции.

54. Хлорсодержащие препараты и окислители, используемые для дезинфекции.

55. Определение качества дезинфекции.

56. Способы обеззараживания трупов и сырья животного происхождения.

57. Способы обеззараживания навоза.

58. Профилактические, истребительские, механические, физические, биологические, химические методы дезинсекции и особенности их проведения.

59. Инсектициды, способы их применения и показания для применения.

60. Способы, средства и методы борьбы с грызунами, как биологическими переносчиками возбудителей инфекционных болезней.

61. Сибирская язва.

62. Туберкулез.

63. Меры по охране людей от заражения сибирской язвой, бруцеллезом, туберкулезом, бешенством.

64. Бруцеллез.

65. Лептоспироз.

66. Ящур

67. Болезнь Ауески.

68. Пастереллез.

69. Листериоз.

70. Столбняк.

71. Туляремия.

72. Оспа млекопитающих.

73. Некробактериоз.

74. Дерматофитозы животных.

75. Эмкар.

76. Паратуберкулез.

77. Лейкоз.

78. Парагрипп-3.

79. Инфекционный ринотрахеит.

80. Вирусная диарея.

81. Злокачественная катаральная горячка.

82. Кампилобактериоз.

83. Хламидиозы.

84. Контагиозная плевропневмония.

85. Чума КРС.

86. Губкообразная энцефалопатия.

87. Инфекционный кератоконъюктивит.

88. Брадзот овец.

89. Инфекционная агалактия овец и коз.

90. Копытная гниль овец.

91. Скрепи овец.

92. Инфекционная анаэробная энтеротоксимия овец.

93. Катаральная лихорадка овец (блютанг).

94. Классическая чума свиней

95. Африканская чума свиней

96. Рожа свиней

97. Вирусный (трансмиссивный) гастроэнтерит свиней

98. Везикулярная болезнь свиней

99. Сап лошадей

100. Ринопневмония лошадей

101. Мыт лошадей

102. Инфекционная анемия лошадей

103. Эпизоотический лимфангит лошадей.

104. Эшерихиозы молодняка

105. Отечная болезнь поросят

106. Стрептококкозы молодняка

107. Сальмонеллезы молодняка

108. Парво и аденовирусная инфекция молодняка

109. Анаэробная дизентерия ягнят

110. Ротавирусная и короновирусная инфекция молодняка.

111. Болезнь Ньюкасло.

112. Грипп птиц

113. Пуллороз птиц.

114. Респираторный микоплазмоз птиц.

115. Оспа птиц.

116. Инфекционный ларинготрахеит и бронхит кур.

117. Болезнь Марека.

118. Орнитоз птиц.

119. Инфекционная бурсальная болезнь птиц (болезнь Гамборо).

120. Инфекционный гепатит утят.

Все заболевания в контрольной работе излагаются

согласно схеме:

1. Определение болезни.

2. История изучения, географическое распространение болезни, ее эпизоотологическое, эпидемиологическое и экономическое значения.

3. Этиология (возбудитель болезни и его характеристика).

4. Эпизоотологические данные:

а) видовая половая, возрастная и породная восприимчивость;

б) источник и резервуар возбудителя инфекции;

в) механизм передачи (способы, пути, фазы и факторы);

г) интенсивность эпизоотического процесса (спорадия, эпизоотия, панзоотия);

д) сезонность и периодичность;

е) факторы, способствующие возникновению и распространению болезни (природно-географические, хозяйственные и др.);

ж) заболеваемость, смертность, летальность.

5. Патогенез.

6. Клинические признаки:

а) инкубационный период,

б) течение, формы проявления,

в) симптомы и возможные осложнения,

г) прогноз и исход болезни.

7. Патоморфологические изменения.

8. Диагноз (основания для окончательного диагноза) и дифференциальный диагноз.

9. Иммунитет и специфическая профилактика.

10. Профилактика и меры борьбы с болезнью.

11. Терапия.

12. Краткие сведения о болезни и ее предупреждение у человека при зооантропонозе.



Дата добавления: 2020-11-18; просмотров: 319 | Нарушение авторских прав | Изречения для студентов


Читайте также:

Рекомендуемый контект:

Поиск на сайте:

© 2020-2020 lektsii.org - Контакты - Последнее добавление
Ген: 0.007 с.

§

Лекции.Орг
Предпоследняя цифра шифра Последняя цифра учебного шифра
5,
43,
63,

23, 53, 83, 113 26, 56, 86, 116 17,
42,
90,

11,
37,
61,

27, 57, 87, 117 20, 38,
82,

4,
47,
68,

25,
31, 77, 105
24,
54,
84,

4,

1,
31,
61,
91,
2,
32,
62,
92,
3,
33,
63,
93,
4,
34,
64,
94,
5,
35,
65,
95,
27,
58,
84,

7,
37,
67,
97,
8,
38,
68,
98,
9,
39,
69,
99,
10,
40,
70,

11,
41,
71,

12,
42,
72,

23,
53,
83,

14,
44,
74,

10, 35, 81,

15,
45,
75,

16,
46,
76,

18,
48,
78,

19,
49,
79,

20,
30,
80,

29,
36, 83,

28, 37, 84, 109 27, 40,
64, 101
26, 45,
61,

25, 46,
67,

24, 51,
68, 102
23,
52,
85,

21, 57,
76,

20, 58, 71, 105
19,
32,
78,

18, 35,
80,

17, 38, 89,

16, 41,
65, 110
15, 44,
62, 113
14, 47, 90, 114 13, 50, 69, 116 12,
53,
88, 103
11, 56, 75, 119 10, 59, 72,

9,
31,
82,

8,
34, 79, 107
7,
39, 81, 108
6,
42,
66, 111
22,
52,
82,

4,
64, 87, 115
3,
49, 70, 117
2,
54, 86, 118
1,
55, 74, 104
22, 60, 73,

4,
38,

8,
42, 95,

13, 37, 98,

18,
59, 115 84
26, 44, 11972 30, 55, 11,

5,
48, 94,

7,
41, 118 71
19,
53, 90,

19,
50, 75, 120
1,
36,
64,

2,
46, 63,

3,
45, 69, 100
19,
60, 83,

6,
39, 70, 104
26,
5,
85, 107
21, 52, 86, 109 8,
33, 89,

21,
51,
81,

5,
49,
74,

16,
34,
75,

13, 48,
76,

20,
38,
82,

6,
36, 66,

14, 56,
79,

28,
32,
67,

7,
44, 87,

30,
57,
66,

23, 54,
80,

9,
55, 73,

13,
43,
73,

29,
41,
72,

22, 53,
88,

18,
48,
78, 108
17,
47,
77,

28,
32,
67,

29, 59, 89, 119 30,
60,
90, 120
30,
33,
77,

15, 43,
65,

Список используемой литературы:

1. Сидорчук, А.А. Общая эпизоотология / А.А. Сидорчук, Е.С. Воронин, А.А. Глушков. - М.: Колос С. - 2004. – 173 с.

2. Инфекционные болезни животных: учебное пособие для вузов / Под редакцией А.А. Кудряшова, А.В. Святковского. – СПб.: Лань. - 2007. – 608 с.

3. Бессарабов, Б.Ф. Инфекционные болезни животных / Б.Ф. Бессарабов, А.А. Вашутин, Е.С. Воронин и др.; Под ред. А.А. Сидорчука. – М.: КолосС. - 2007. – 671 с.

4. Урбан, В.П. Практикум по эпизоотологии и инфекционным болезням с ветеринарной санитарией / Урбан В.П., Сафин М.А., Сидорчук А.А. и др.: учеб. пособие для вузов. - М.: Колос. - 2003. - 216 с.

Приложение 1

Приложение

к приказу Минсельхоза России

от 19 декабря 2020 г. N 476

ПЕРЕЧЕНЬ

ЗАРАЗНЫХ, В ТОМ ЧИСЛЕ ОСОБО ОПАСНЫХ, БОЛЕЗНЕЙ ЖИВОТНЫХ,

ПО КОТОРЫМ МОГУТ УСТАНАВЛИВАТЬСЯ ОГРАНИЧИТЕЛЬНЫЕ

МЕРОПРИЯТИЯ (КАРАНТИН)

1. Акарапидоз пчел

2. Алеутская болезнь норок

3. Американский гнилец пчел

4. Африканская чума свиней <*>

5. Аэромонозы лососевых и карповых рыб

6. Бешенство <*>

7. Блутанг <*>

8. Болезнь Ауески

9. Болезнь Марека

10. Болезнь Ньюкасла

11. Ботриоцефалез карповых рыб

12. Брадзот

13. Бранхиомикоз карповых лососевых, сиговых рыб

14. Бруцеллез (включая инфекционный эпидидимит баранов)

15. Варроатоз

16. Весенняя виремия карпов

17. Вирусная геморрагическая болезнь кроликов

18. Вирусная геморрагическая септицемия лососевых рыб

19. Вирусный гепатит уток

20. Вирусный паралич пчел

21. Вирусный энтерит гусей

22. Вирусный энтерит норок

23. Воспаление плавательного пузыря карповых рыб

24. Высокопатогенный грипп птиц <*>

25. Гиподерматоз крупного рогатого скота

26. Грипп лошадей

27. Губкообразная энцефалопатия крупного рогатого скота

28. Европейский гнилец пчел

29. Злокачественная катаральная горячка крупного рогатого скота

30. Инфекционная агалактия

31. Инфекционная анемия лошадей (ИНАН)

32. Инфекционный бронхит кур

33. Инфекционный бурсит (Болезнь Гамборо)

34. Инфекционный ларинготрахеит кур

35. Инфекционный некроз гемопоэтической ткани лососевых рыб

36. Инфекционный некроз поджелудочной железы лососевых рыб

37. Инфекционный ринотрахеит (ИРТ)

38. Кампилобактериоз

39. Классическая чума свиней

40. Лейкоз крупного рогатого скота

41. Лептоспироз

42. Листериоз

43. Лихорадка Ку

44. Мешотчатый расплод

45. Миксобактериозы лососевых и осетровых рыб

46. Миксоматоз

47. Некробактериоз

48. Нозематоз

49. Оспа овец и коз <*>

50. Парагрипп-3

51. Паратуберкулез

52. Пастереллез разных видов

53. Псевдомоноз

54. Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС)

55. Ринопневмония лошадей

56. Рожа свиней

57. Сальмонеллезы (включая тиф-пуллороз)

58. Сап <*>

59. Сибирская язва <*>

60. Синдром снижения яйценоскости (ССЯ-76)

61. Скрепи овец и коз

62. Случная болезнь лошадей (трипаносомоз)

63. Трансмиссивный гастроэнтерит свиней

64. Трихинеллез

65. Туберкулез

66. Филометроидоз карповых рыб

67. Хламидиозы

68. Хламидиоз (энзоотический аборт овец)

69. Чума крупного рогатого скота <*>

70. Чума плотоядных

71. Эмфизематозный карбункул (эмкар)

72. Энтеровирусный энцефаломиелит свиней (болезнь Тешена)

73. Энтеротоксемия

74. Энцефаломиелиты лошадей

75. Ящур <*>

--------------------------------

<*> Особо опасные болезни животных.

Учебное издание

Бобкова Галина Николаевна

Кривопушкин Андрей Владимирович

ОБЩАЯ ЭПИЗООТОЛОГИЯ

Редактор Павлютина И.П.

Подписано к печати 07.09.2020 г.

Формат 60х84 1/16. Бумага печатная. Усл. печ. л. 4,18.

Тираж 100 экз. Изд. № 2216.

Издательство Брянской государственной сельскохозяйственной академии

243365 Брянская обл. Выгоничский район, с. Кокино



Дата добавления: 2020-11-18; просмотров: 323 | Нарушение авторских прав | Изречения для студентов


Читайте также:

Рекомендуемый контект:

Поиск на сайте:

© 2020-2020 lektsii.org - Контакты - Последнее добавление
Ген: 0.007 с.

, , , , , , , , , , , , , , , ,
Поделиться
Похожие записи
Комментарии:
Комментариев еще нет. Будь первым!
Имя
Укажите своё имя и фамилию
E-mail
Без СПАМа, обещаем
Текст сообщения
Adblock detector